Глава 14 Растительные патогены и стратегии борьбы с аквапоникой
2 years ago•
22 min readЖиль Стувенакерс, Питер Дапприч, Себастьян Массарт и М. Хайсам Джиджакли
Абстракт Среди разнообразия заболеваний растений, происходящих в аквапонике, наиболее проблематичными являются почвенные патогены, такие как Fusarium spp., Phytophthora spp. и Pythium spp., из-за их предпочтения в условиях влажной и водной среды. Phytophthora spp. и Pythium spp., которые принадлежат к псевдогрибкам омицетов, требуют особого внимания из-за их подвижной формы дисперсии, так называемых зооспор, которые могут свободно и активно перемещаться в жидкой воде. В сочетании с аквапоникой лечебные методы все еще ограничены из-за возможной токсичности пестицидов и химических агентов для рыб и полезных бактерий (например, нитрифицирующих бактерий биофильтра). Кроме того, разработка средств биоконтроля для использования в аквапонике еще находится на начальном этапе. Следовательно, способы контроля начальной инфекции и прогрессирования заболевания в основном основаны на профилактических действиях и физическом лечении воды. Тем не менее, подавление (подавление) может произойти в аквапонной среде с учетом последних документов и супрессивной активности, уже выделенной в гидропонике. Кроме того, аквапонная вода содержит органическое вещество, которое может способствовать созданию и росту гетеротрофных бактерий в системе или даже непосредственно улучшить рост растений и жизнеспособность. Что касается органической гидропоники (т.е. использования органических удобрений и органических растительных сред), то эти бактерии могут выступать в качестве антагонистских агентов или в качестве средств защиты растений для защиты растений от болезней. В будущем необходимо активизировать исследования по подавлению болезни аквапонного биотопа, а также выделить, характеристику и рецептуру антагонистов возбудителей микробных растений. Наконец, хорошие знания в области быстрой идентификации патогенов в сочетании с методами борьбы с болезнями и мониторингом заболеваний, как это рекомендовано при комплексной борьбе с сельскохозяйственными вредителями, являются ключом к эффективной борьбе с болезнями растений в аквапонике.
Ключевые слова Патогенные микроорганизмы · Грибы · Аквапоника · Биотоп · подавление · Борьба с сельскохозяйственными вредителями · Биоконтроль
Содержание
- 14.1 Введение
- 14.2 Микроорганизмы в аквапонике
- 14.3 Защита растений от патогенов в аквапонике
- 14.4 Роль органического вещества в биоконтрольной активности в аквапонных системах
- 14.5 Выводы и будущие соображения
- Ссылки
—
Г. Стувенакерс · С. Массарт · М. Х. Джиджакли
Лаборатория комплексной и городской патологии растений, Университет Льежа, Gembloux Agro-Bio Tech, Жемблу, Бельгия
П. Дапприч
Департамент сельского хозяйства, Фаххохшуле Зюдвестфалинский университет прикладных наук, Зёст, Германия
© Автор (ы) 2019 353
С. Годдек и др. (ред.), Системы производства продуктов питания Aquaponics, https://doi.org/10.1007/978-3-030-15943-6_14
—
Ссылки
Адамчик Б, Смоландер А, Китунен В, Годлевский М (2010) Белки как источник азота для растений: рассказ об экссудации протеаз корнями растений. Сигнал завода Behav 5:817 —819. https://doi.org/10.4161/psb.5.7.11699
Albajes R, Лодовица Гуллино M, Ван Лентерен JC, Elad Y (2002) Комплексная борьба с вредителями и болезнями в тепличных культурах. Академические издательства Kluwer. https://doi.org/10.1017/ CBO9781107415324.004
Alhussaen K (2006) Pythium и Phytophtora связаны с корневой болезнью гидропонного салата. Университет технологий Сиднея Факультет естественных наук. https://opus.lib.uts.edu.au/handle/10453/ 36864
Anderson TS, de Villiers D, Timmons MB (2017) Рост и тканевый элементный состав реакции шпината (Spinacia oleracea) на гидропонные и аквапонные условия качества воды. Садоводство 3:32. https://doi.org/10.3390/horticulturae3020032
Аррас Г., Арру С (1997) Механизм действия некоторых микробных антагонистов против грибковых патогенов. Энн Микробиол Энзимол 47:97 —120
Attramadal KJK, Salvesen I, Xue R, Øie G, Størseth TR, Vadstein O, Olsen Y (2012) Рециркуляция как возможная стратегия микробного контроля при производстве морских личинок. Аквак ENG 46:27 —39. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2011.10.003
Bartelme RP, Oyserman BO, Blom JE, Sepulveda-Villet OJ, Newton RJ (2018) Удаление почвы: рост растений способствует микробиологическим возможностям в аквапонике. Передняя микробиол 9:8. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.00008
Beneduzi A, Ambrosini A, Passaglia LMP (2012) Ризобактерия, способствующая росту растений (PGPR): их потенциал как антагонистов и биоконтролирующих агентов. Генет Мол Биол 35 (4) :1044—1051
Bittsanszky A, Gyulai G, Junge R, Schmautz Z, Komives T, Has CAR, Otto H (2015) Защита растений в экоциклических сельскохозяйственных системах: на примере аквапоники. In: Международный конгресс по защите растений (МККЗР), Берлин, Германия, стр. 2—3. https://doi.org/10.13140/RG.2.1. 4458.0321
Влияние лактата, гумата и Bacillus subtilis на рост томатных растений в гидропонных системах//Вестн. В: Международный симпозиум по выращиванию сред и гидропоники. Акта Садоводство, стр. 231—239
Марка Т (2001) Важность и характеристика биологического компонента в медленных фильтрах. Акта Хортик 554:313 —321
Calvo-Bado LA, Pettitt TR, Parsons N, Pettch GM, Morgan JAW, Whipps JM (2003) Пространственный и временный анализ микробного сообщества в медленных песчаных фильтрах, используемых для обработки садоводческой оросительной воды. Апл Экологический микробиол 69:2116 —2125. https://doi.org/ 10.1128/AEM.69.4.2116
Биологический контроль микробных возбудителей растений//Вестн. Кембриджский университет Пресс, Кембри
Влияние экссудата корня гороха на прорастание кист Pythium aphanidermatum zoospore. Может J Бот 48:1501 —1514
Chatterton S, Sutton JC, Boland GJ (2004) Сроки Pseudomonas хлорорафис приложений для контроля Pythium aphanidermatum, Pythium dissotocum и корневой гнили в гидропонных перцах. Биол контроль 30:360 —373. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2003.11.001
Cherif M, Tirilly Y, Belanger RR (1997) Влияние концентрации кислорода на рост растений, перекисное окисление липидов и восприимчивость корней томата к Pythium_ в гидропонных условиях. Eur J растение Патол 103:255 —264
Чинта ЮД, Кано К, Видиастути А, Фукахори М, Кавасаки С, Эгути Y, Мису H, Одани H, Чжоу S, Нарисава К, Фудзивара К, Синохара М, Сато Т (2014) Влияние крутого ликера кукурузы на гниль салата (Fusarium oxysporum f.sp. lactucae) в гидропонных культурах. J Sci Food Сельское хозяйство 94:2317-2323. https://doi.org/10.1002/jsfa.6561
Chinta YD, Eguchi Y, Widiastuti A, Shinohara M, Sato T (2015) Органическая гидропоника индуцирует системную устойчивость к переносимому в воздухе патогену Botrytis cinerea (серая плесень). J завод взаимодействовать 10:243 —251. https://doi.org/10.1080/17429145.2015.1068959
Colhoun J (1973) Влияние факторов окружающей среды на болезни растений. Анну Рев Фитопатол
11:343 —364 da Silva Cerozi B, Fitzsimmons K (2016) Использование Bacillus spp. для повышения доступности фосфора и служит стимутором роста растений в системах аквапоники. Sci Hortic (Амстердам) 211:277 —282. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2016.09.005
Delaide B, Goddek S, Gott J, Soyeurt H, Jijakli HM (2016) Сатива (Lactuca sativa L. var. Сукрин) производительность роста в дополненном растворе аквапоники превосходит гидропонику. Вода 8:1 —11. https://doi.org/10.3390/w8100467
Déniel F, Rey P, Chérif M, Guillou A, Tirilly Y (2004) Бактерии коренных народов с антагонистической и стимулирующей рост растений улучшают эффективность медленной фильтрации в безпочвенном культивировании. Может J микробиол 50:499 —508. https://doi.org/10.1139/w04-034
Dordas C (2008) Роль питательных веществ в борьбе с болезнями растений в устойчивом сельском хозяйстве: обзор.
Agron Sustain Dev 28:33 —46. https://doi.org/10.1051/agro:2007051 du Jardin P (2015) Биостимуляторы растений: определение, понятие, основные категории и регулирование. Sci Hortic (Амстердам) 196:3 —14. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.021
Ehret DL, Bogdanoff C, Utkhede R, Lévesque A, Menzies JG, Ng K, Portree J (1999) Борьба с болезнями с медленной фильтрацией для тепличных культур, выращенных в рециркуляции. Тихоокеанская агропродовольственная компания Res Cent Tech Rep 155:37
Ehret DL, Alsanius B, Wohanka W, Menzies JG, Utkhede R (2001) Дезаражение рециркуляционных питательных растворов в тепличном садоводстве. Агрономия 21:323 —339. https://doi.org/10.1051/ agro:2001127
Директива Европейского парламента (2009) 2009/128/EC Европейского парламента и Совета от 21 октября 2009 года, устанавливающая рамки для действий Сообщества по обеспечению устойчивого использования пестицидов. 309 октября, стр. 71—86. https://doi.org/10.3000/17252555.L_2009.309
Evenhuis B, Nijhuis E, Lamers J, Verhoeven J, Postma J (2014) Альтернативные методы контроля Phytophthora кактора в клубнике, культивируемой в безпочных растительных средах, Acta Hortic 1044:337 —342. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2014.1044.44
ФАО (2008 год) Надлежащая сельскохозяйственная практика [Документ WWW]. http://www.fao.org/prods/gap/. Доступ к 27 февр. 2018
Folman LB, De Klein MJEM, Postma J, Van Veen JA (2004) Получение противогрибковых соединений ферментами Lysobacter 3.1T8 в различных условиях относительно его эффективности в качестве биоконтрольного агента Pythium aphanidermatum в огурце. Биол. Контрольная 31:145 —154. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2004.03.008
Fujiwara K, Aoyama C, Takano M, Shinohara M (2012) Пресечение болезни бактериального увядания Ralstonia solanacearum органической гидропонной системой. Патол растений J Gen. https://doi.org/10. 1007/s10327-012-0371-0
Fujiwara K, Iida Y, Iwai T, Aoyama C, Inukai R, Ando A, Ogawa J, Ohnishi J, Terami F, Takano M, Shinohara M (2013) Ризосферное микробное сообщество в системе множественной параллельной минерализации подавляет патогенный гриб Fusarium Oxysporum. Микробиологиопен 2:997 —1009. https://doi.org/10.1002/mbo3.140
Funck-Jensen D, Hockenhull J (1983) Является ли демпфирование, вызванное Pythium, менее проблематичным в гидропонике, чем в традиционных системах выращивания? Акта Хортик 133:137 —145
Furtner B, Bergstrand K, Brand T (2007) Абиотические и биотические факторы в медленных фильтрах, интегрированных в замкнутые гидропонные системы. Эр J Хортик наук 72:104 —112
Ганешан Г., Кумар А.М. (2005) Pseudomonas флуоресцены, потенциальный бактериальный антагонист для борьбы с болезнями растений. J Plant Interact 1:123 —134. https://doi.org/10.1080/17429140600907043 Geary B, Clark J, Hopkins BG, Jolley VD (2015) Недостаточные, адекватные и избыточные уровни азота, установленные в гидропонике для исследований биотического и абиотического стресс-взаимодействия в картофеле. J завод Нутр 38:41 —50. https://doi.org/10.1080/01904167.2014.912323
Goddek S, Vermeulen T (2018) Сравнение показателей роста Lactuca sativa в дождевой воде и растворах гидропонных питательных веществ на основе RAS-воды. Аквак Инт 10. https://doi.org/10.1007/s10499018-0293-8
Goddek S, Delaide B, Mankasingh U, Вала Рагнарсдоттир К, Джиджакли Г, Тораринсдоттир Р (2015) Проблемы устойчивой и коммерческой аквапоники. Устойчивость 7:4199 —4224. https://doi. орг/10.3390/su7044199
Goddek S, Espinal CA, Delaide B, Jijakli MH, Schmautz Z, Wuertz S, Keesman KJ (2016) Навигация в сторону развязанных аквапонных систем: подход к проектированию системной динамики. Вода (Швейцария) 8:1 -29. https://doi.org/10.3390/W8070303
Gonçalves А.А., Gagnon GA (2011) Применение озона в рециркулирующей системе аквакультуры: обзор. Наука по озону 33:345 —367. https://doi.org/10.1080/01919512.2011.604595
Гравий V, Dorais M, Dey D, Vandenberg G (2015) Рыбные стоки способствуют росту корней и подавляют грибковые заболевания при пересадке томатов. Can J завод Sci 95:427 —436
Grunert O, Hernandez-Sanabria E, Vilchez-Vargas R, Jauregui R, Pieper DH, Perneel M, Van Labeke M-C, Reheul D, Boon N (2016) Минеральные и органические растительные среды имеют различную общинную структуру, стабильность и функциональность в безпочвенных культурных системах. Sci. Реп. 6:18837. https://doi.org/10.1038/srep18837
Haarhoff J, Cleasby JL (1991) Биологические и физические механизмы при медленной фильтрации песка. В: Logsdon GS (ред.) Медленная фильтрация песка, том 1. Американское общество гражданских инженеров, Нью-Йорк, стр. 19—68
Haas D, Défago G (2005) Биологический контроль почвенных патогенов флуоресцентными псевдомонадами. Нат Рев Микробиол 3:307 —319. https://doi.org/10.1038/nrmicro1129
Hirayama K, Mizuma H, Mizue Y (1988) Накопление растворенных органических веществ в закрытых системах рециркуляции. Аквак Энг 7:73 —87. https://doi.org/10.1016/0144-8609 (88) 90006-4
Hong CX, Moorman GW (2005) Патогенные микроорганизмы растений в оросительной воде: проблемы и возможности. CRC Крит Рев Завод Sci 24:189 —208. https://doi.org/10.1080/07352680591005838
Hultberg M, Holmkvist A, Alsanius B (2011) Стратегии введения биоповерхностно-активных псевдомонадов для биоконтроля в замкнутых гидропонных системах. Урожай Прот 30:995 —999. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2011.04.012
James, Becker JO (2007) Выявление микроорганизмов, участвующих в подавлении специфических патогенов в почве. Анну Рев Фитопатол 45:153 —172. https://doi.org/10.1146/annurev.phyto.45.062806.094354
Jarvis WR (1992) Борьба с болезнями в тепличных культурах. Американское фитопатологическое общество, Сент-Пол
Jones SW, Donaldson SP, Deacon JW (1991) Поведение зооспор и кист зооспор по отношению к корневой инфекции Pythium_ aphanidermatum. Новый Фитол 117:289 —301. https://doi.org/10. 1111/j.1469-8137.1991.tb04910.x
Khalil S, Alsanius BW (2001) Динамика местной микрофлоры, населяющей корневую зону, и питательного раствора томата в коммерческой закрытой теплице. Гартенбаувисеншафт 66:188 —198
Влияние содержания воды в растущей среде на биологический контроль корневых патогенов в закрытой безпочной системе//Изв. J Hortic Sci Biotechnol 86:298 —304. https://doi.org/ 10.1080/14620316.2011.11512764
Khalil S, Hultberg M, Alsanius BW (2009) Влияние растущей среды на взаимодействие между биоконтролирующими агентами и патогенами корня томата в замкнутой гидропонной системе. Ю. Хортич, биотехнол 84:489 —494. https://doi.org/10.1080/14620316.2009.11512553
Khan A, Sutton JC, Grodzinski B (2003) Влияние Pseudomonas хлорорафис на Pythium aphanidermatum и корневую гниль в перцах, выращенных в мелкомасштабных гидропонных котлованах. Биоконтроль науки и техники 13:615 —630. https://doi.org/10.1080/0958315031000151783
Koohakan P, Ikeda H, Jeanaksorn T, Tojo M, Kusakari S-I, Okada K, Sato S (2004) Оценка местных микроорганизмов в безпочвенной культуре: встречаемость и количественные характеристики в различных системах выращивания. Sci Hortic (Амстердам) 101:179 —188. https://doi.org/10.1016/j. scienta.2003.09.012
Lee S, Lee J (2015) Полезные бактерии и грибы в гидропонных системах: виды и характеристики гидропонных методов производства пищевых продуктов. Sci Hortic (Амстердам) 195:206 —215. https://doi.org/10. 1016/j.scienta.2015.09.011
Леонард Н., Blancheton JP, Guiraud JP (2000) Популяции гетеротрофных бактерий в экспериментальной рециркулирующей системе аквакультуры. Аквак Энг 22:109 —120
Леонард N, Guiraud JP, Gasset E, Cailleres JP, Blancheton JP (2002) Бактерии и питательные вещества — азот и углерод — в системе рециркуляции для производства морского окуня. Аквак Энг 26:111 —127
Лепойр П. (2003) Фитопатология, 1-е эдитио. ред. Les Presses Агрономики Жемблу Брюссель: De Boeck
Liu W, Sutton JC, Grodzinski B, Kloepper JW, Reddy MS (2007) Биологический контроль корневой гнили хризантемы в мелкомасштабных гидропонных установках. Фитопаразитика 35:159 —178. https://doi.org/10.1007/BF02981111
Love DC, Fry JP, Li X, Hill ES, Genello L, Semmens K, Thompson RE (2015) Коммерческое производство аквапоники и рентабельность: результаты международного исследования. Аквакультура 435:67 —74. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.09.023
Maher M, Prasad M, Raviv M (2008) Ch 11 — органические компоненты безпочвенной среды. //Безпочная культура: теория и практика. Эльсевье Б.В., Амстердам, стр. 459—504. https://doi.org/10.1016/ B978-044452975-6.50013-7
Mangmang JS, Deaker R, Rogers G (2014) Ответ саженцев салата, оплодотворенных рыбными стоками, на инокуляцию Azospirillum brasilense. Биол Агрик Хортик 31:61 —71. https://doi.org/ 10.1080/01448765.2014.972982
Mangmang JS, Deaker R, Rogers G (2015a) Влияние прививки Azospirillum brasilense на базилик, выращенный в системе производства аквапоники. Орг Агрик 6:65 —74. https://doi.org/10.1007/ s13165-015-0115-5
Mangmang JS, Deaker R, Rogers G (2015b) Максимальное использование рыбных стоков для производства саженцев овощей компанией Azospirillum Brasilense. Проседия Энвирон Sci 29:179. https://doi.org/ 10.1016/j.proenv.2015.07.248
Mangmang JS, Deaker R, Rogers G (2015c) Ответ саженцев огурцов, оплодотворенных рыбными стоками, на Azospirillum brasilense. Инт J Вег Sci 5260:150409121518007. https://doi.org/10. 1080/19315260.2014.967433
Martin FN, Loper JE (1999) Заболевания почвенных растений, вызванные Pythium_ spp.: экология, эпидемиология и перспективы биологического контроля почвенных заболеваний растений, вызванных Pythium_ spp.: экология, эпидемиология и перспективы биологического контроля. Завод CRC Crit Rev Sci 18:11 —181
McMurty MR, Nelson PV, Sanders DC, Hodges L (1990) Песочная культура овощей с использованием рециркулированных аквакультурных сточных вод. Апль Агрик Рес 5:280 —284
McPherson GM, Harriman MR, Pattison D (1995) Потенциал распространения корневых заболеваний в рециркулирующих гидропонных системах и их контроль с помощью дезинфекции. Мед Фак Ландбаув Юнив Гент 60:371 —379
Michaud L, Blancheton JP, Bruni V, Piedrahita R (2006) Влияние твердых частиц органического углерода на гетеротрофные популяции бактерий и эффективность нитрификации в биологических фильтрах. Аквак ENG 34:224 —233. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2005.07.005
Michaud L, Giudice AL, Interdonato F, Triplett S, Ying L, Blancheton JP (2014) C/N вызванный соотношением структурный сдвиг бактериальных сообществ внутри лабораторных биофильтров аквакультуры. Аквак Энг 58:77 —87. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2013.11.002
Mitchell CE, Reich PB, Tilman D, Groth JV (2003) Влияние повышенного COSub2/Sub, осаждения азота и уменьшения видового разнообразия на лиственную грибковую болезнь растений. Глоб Чанг Биол 9, 438—451 https://doi.org/10.1046/j.1365-2486.2003.00602.x
Monsees H, Kloas W, Wuertz S (2017) Развязанные системы на испытании: устранение узких мест для улучшения аквапонных процессов. ПЛОС Один 12:1 —18. https://doi.org/10.1371/journal.pone. 0183056
Montagne V, Charpentier S, Cannavo P, Capiaux H, Grosbellet C, Lebeau T (2015) Структура и активность спонтанных грибковых сообществ в органических субстратах, используемых для безпочвенных культур. Sci Hortic (Амстердам) 192:148 —157. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.06.011
Montagne V, Capiaux H, Barret M, Cannavo P, Charpentier S, Grosbellet C, Lebeau T (2017) Бактериальные и грибковые сообщества варьируются в зависимости от типа органического субстрата: последствия для биоконтроля безпочных культур. Энвирон Хим Летт 15:537 —545. https://doi.org/10.1007/s10311017-0628-0
Моруцци S, Фиррао G, Полано C, Борселли S, Лоши А, Эрмакора П, Лой Н, Мартини М (2017) Геномическая характеристика штамма Pf4 Pseudomonas_ sp. потенциального биоконтролирующего агента в гидропонике. Биоконтроль наук Технол 27:969 —991. https://doi.org/10.1080/09583157.2017. 1368454
Mukerji KG (2006) Микробная активность в ризосфере. Springer/GmbH & Co, Дордрехт/Берлин и Гейдельберг. https://doi.org/10.1017/CBO9781107415324.004
Мунгия-Фрагозо П, Алаторре-Жаком О, Рико-Гарсия Е, Торрес-Пачеко I, Крус-Эрнандес А, Окампо-Веласкес РВ, Гарсия-Трехо ЮФ, Гевара-Гонсалес РГ (2015) Перспективы аквапонных систем: (Омические) технологии для анализа микробных сообществ. Биомед Res Int 2015:10. https://doi.org/10.1155/2015/480386
Биологическое управление болезнями сельскохозяйственных культур: том 1: характеристика биологических средств контроля, Биологическое управление болезнями сельскохозяйственных культур. Спрингер, Дордрехт. https://doi.org/10.1007/978-94-007-6380-7_1
Naylor SJ, Moccia RD, Durant GM (1999) Химический состав утилизированных твердых рыбных отходов (навоза) коммерческих ферм радужной форели в Онтарио. Канада N Am J Аквак 61:21 —26. https://doi.org/10.1577/1548-8454(1999)061\0021:TCCOSS\2.0.CO;2
Немети S, Битцански А, Шмаутц Z, Юнге Р, Комивес Т (2016) Защита растений от вредителей и болезней в аквапонных системах. В: Экологический след в Центральной Европе. Университетский колледж туризма и экологии прессы, Суха Бескидка, стр. 1—8
Nielsen CJ, Ferrin DM, Stanghellini ME (2006) Эффективность биоПАВ в управлении Phytophthora capsici на перце в рециркулирующих гидропонных системах. Может J растение Патол 28:450 —460. https://doi.org/10.1080/07060660609507319
Nogueira R, Melo LF, Purkhold U, Wuertz S, Wagner M (2002) Динамика нитрифицирующей и гетеротрофической популяции в биопленочных реакторах: влияние времени гидравлического удержания и присутствия органического углерода. Вода Res 36:469 —481
Pagliaccia D, Ferrin D, Stanghellini ME (2007) Хемо-биологическое подавление корнеинфицированных зооспористых патогенов в рециркулирующих гидропонных системах. Почва растений 299:163 —179. https://doi. орг/10.1007/s11104-007-9373-7
Pagliaccia D, Merhaut D, Colao MC, Ruzzi M, Saccardo F, Stanghellini ME (2008) Селективное повышение популяции флуоресцентных псевдомонад после внесения изменений в рециркуляционный питательный раствор гидропонически выращенных растений с помощью стабилизатора азота. Микроб Экол 56:538 —554. https://doi.org/10.1007/s00248-008-9373-z
Pantanella E, Cardarelli M, Colla G, Rea E, Marcucci A (2010) Аквапоника против гидропоники: производство и качество листьев салата, стр. 887—893. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2012. 927.109
Pantanella E, Cardarelli M, Di Mattia E, Colla G (2015) Аквапоника и безопасность пищевых продуктов: влияние ультрафиолетовой стерилизации на общее производство колиформ и салата. В: Конференция и выставка по безпочной культуре, стр. 71—76
Parvatha Reddy P (2016) Устойчивая защита растений под защищенным культивированием. Спрингер. https://Doi.org/DOI, Спрингер. https://doi.org/10.1007/978-981-287-952-3_7
Paulitz TC, Bélanger RR (2001) Биологический контроль в тепличных системах. Анну Рев Фитопатол 39:103 —133
Pérez-García A, Romero D, de Vicente A (2011) Защита растений и стимуляция роста микроорганизмами: биотехнологическое применение Bacilli в сельском хозяйстве. Керр Опин Биотехнол 22 (2) :187—193. https://doi.org/10.1016/j.copbio.2010.12.003
Postma J, van Os E, Bonants PJM (2008) Ch 10 — стратегии обнаружения и управления патогенами в безпочвенной системе растениеводства. //Безпочная культура: теория и практика. Эльсевье Б.В., Амстердам, стр. 425—457. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-52975-6.50012-5
Postma J, Stevens LH, Wiegers GL, Davelaar E, Nijhuis EH (2009) Биологический контроль Pythium aphanidermatum в огурце с комбинированным применением штамма ферментов Lysobacter
3.1T8 и хитозан. Biol Control 48:301 —309. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2008.11.006 Rakocy J (2007) Десять рекомендаций по аквапонным системам. Аквапоника J 46:14 —17
Rakocy JE (2012) Аквапоника — интеграция рыбной и растительной культуры. В: Tidwell JH (ред.) Системы производства аквакультуры. Уайли, Нью-Йорк, стр. 343—386
Rakocy JE, Maseer PM, Losordo TM (2006) Системы производства рециркулирующих резервуаров для аквакультуры: Аквапоника — интегрированная рыбная и растительная культура. Южный Рег Аквак Цент Публикация № 454, 16pp. http://srac.tamu.edu/getfile.cfm?pubid=105
Renault D, Déniel F, Benizri E, Sohier D, Barbier G, Rey P (2007) Характеристика штаммов Bacillus и Pseudomonas с подавительными признаками, выделенными из системы гидропоно-медленной фильтрации томатов. Может J микробиол 53:784 —797. https://doi.org/10.1139/W07-046
Renault D, Vallance J, Déniel F, Wery N, Godon JJ, Barbier G, Rey P (2012) Разнообразие бактериальных сообществ, которые колонизируют фильтрующие блоки, используемые для контроля патогенов растений в безпочных культурах. Микроб Экол 63:170 —187. https://doi.org/10.1007/s00248-011-9961-1
Resh HM (2013) Гидропоники производства пищевых продуктов: окончательное руководство для продвинутого домашнего садовника и коммерческого гидропонного производителя, 7-е издание. CRC Пресс, Бока Ратон
Динамика корневых микроорганизмов в закрытых гидропонных системах возделывания//Вестн. Кафедра биосистем и технологий, Шведский университет сельскохозяйственных наук, Алнарп
Rurangwa E, Verdegem MCJ (2015) Микроорганизмы в рециркулирующих системах аквакультуры и управление ими. Рев Аквак 7:117 —130. https://doi.org/10.1111/raq.12057
Saha S, Monroe A, Day MR (2016) Рост, урожайность, качество растений и питание базилика (Ocimum basilicum L.) в безпочных сельскохозяйственных системах. Энн Агрик Sci 61:181 —186. https://doi.org/10. 1016/j.aoas.2016.10.001
Schmautz Z, Graber A, Jaenicke S, Goesmann A, Junge R, Smits THM (2017) Микробное разнообразие в различных средах системы аквапоники. Арка Микробиол 1—8. https://doi.org/10. 1007/s00203-016-1334-1
Шрайер Х. Дж., Мирзоян Н., Сайто К (2010) Микробное разнообразие биологических фильтров в рециркулирующих системах аквакультуры. Керр Опин Биотехнол 21:318 —325. https://doi.org/10.1016/j.copbio.2010. 03.011
Sharrer MJ, Summerfelt ST, Bullock GL, Gleason LE, Taeuber J (2005) Инактивация бактерий с использованием ультрафиолетового облучения в рециркулирующей лососевой системе культуры. Аквак Энг 33:135 —149. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2004.12.001
Шинохара М, Аояма С, Фудзивара К, Ватанабе А, Омори H, Уэхара Y, Такано М (2011) Микробная минерализация органического азота в нитрат, чтобы позволить использовать органические удобрения в гидропонике. Почвоведение завод Нутр 57:190 —203. https://doi.org/10.1080/00380768.2011.554223
Сираков I, Lutz M, Graber A, Mathis A, Staykov Y (2016) Потенциал комбинированной биоконтрольной активности против грибковых рыб и возбудителей растений бактериальными изолятами из модельной аквапонной системы. Вода 8:1 -7. https://doi.org/10.3390/w8110518
Snoeijers SS, Alejandro P (2000) Влияние азота на развитие заболеваний и экспрессию генов бактериальных и грибковых возбудителей растений. Eur J растение Патол 106:493 —506
Сомервилль C, Cohen M, Pantanella E, Stankus A, Lovatelli A (2014) Маломасштабное аквапоническое производство пищевых продуктов — комплексное рыбоводство и растениеводство. ФАО, Рим
Софер CR, Sutton JC (2011) Количественные зависимости Pseudomonas хлорорафис 63-28 к Pythium корневой гнили и роста в гидропонных перцах. Троп растение Патол 36:214 —224. https://doi.org/10.1590/S1982-56762011000400002
Spadaro D, Gullino ML (2005) Повышение эффективности средств биоконтроля против почвенных патогенов. Урожай Прот 24:601 —613. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2004.11.003
Стенгеллини М.Е., Миллер Р.М. (1997) Их идентичность и потенциальная эффективность в биологическом контроле патогенов зооспористых растений. Завод Дис 81:4 —12
Stanghellini ME, Расмуссен SL (1994) Гидропоника: раствор для зооспористых патогенов. Завод Дис 78:1129 —1138
Stouvenakers G, Sébastien M, Haissam JM (2017) Биоконтрольные свойства рециркулирующей воды аквакультуры против гидропонных корневых патогенов. Устная презентация на встрече Aquaculture Europe 2017, Дубровник, Хорватия
Sugita H, Nakamura H, Shimada T (2005) Микробные сообщества, связанные с фильтрующими материалами в рециркулирующих системах аквакультуры пресноводных рыб. Аквакультура 243:403 —409. https://doi.org/ 10.1016/j.aquaculture.2004.09.028
Sutton JC, Sopher CR, Owen-Going TN, Liu W, Grodzinski B, Hall JC, Benchimol RL (2006) Этиология и эпидемиология корневой гнили в гидропоновых культурах: современные знания и перспективы. Сумма Фитопатол 32:307 —321. https://doi.org/10.1590/S010054052006000400001
Takeda S, Kiyono M (1990) Характеристика желтых веществ, накопленных в замкнутой системе рециркуляции для рыбной культуры. //Материалы второго Азиатского рыбохозяйственного форума, стр. 129—132
Tal Y, Watts JEM, Schreier SB, Sowers KR, Schreier HJ, Schreier HJ (2003) Характеристика микробного сообщества и процессов преобразования азота, связанных с биореакторами подвижного слоя в замкнутой рециркулированной системе марикультуры. Аквакультура 215:187 —202
Thongkamngam T, Jaenaksorn T (2017) Fusarium oxysporum (F221-B) как биоконтролирующее средство против патогенных грибов in vitro и в гидропонике. Завод Prot Sci 53:85 —95. https://doi.org/10. 17221/59/2016-ППС
Timmons MB, Эбелинг JM (2010) Рециркулирующая аквакультура, 2-я изд. Издание NRAC, Итака
Tu JC, Papadopoulos AP, Hao X, Zheng J (1999) Взаимосвязь корневой гнили Pythium и ризосферных микроорганизмов в замкнутой циркулирующей и открытой системе в культуре каменной шерсти томата. Акта Хорт (ИГС) 481:577 —583
Vallance J, Déniel F, Le Floch G, Guérin-Dubrana L, Blancard D, Rey P (2010) Патогенные и полезные микроорганизмы в безпочных культурах. Агран Sustain Dev 31:191 —203. https://doi.org/ 10.1051/agro/2010018
Van Der Gaag DJ, Wever G (2005) Кондуцированность различных безпочвенных растительных сред к корню Pythium_ и корневой гнили огурца в почти коммерческих условиях. Eur J завод Патол 112:31 —41. https://doi.org/10.1007/s10658-005-1049-7
Van Os EA (2009) Сравнение некоторых химических и нехимических методов лечения для дезинфекции рециркулирующего раствора питательных веществ. Акта Хортик 843:229 —234
Van Os EA, Amsing JJ, Van Kuik AJ, Willers H (1999) Медленная фильтрация песка: потенциальный метод устранения патогенов и нематод в рециркулирующих растворах питательных веществ из выращенных в стекле культур. Акта Хортик 481:519 —526
van Os EA, Bruins M, Wohanka W, Seidel R (2001) Медленная фильтрация: метод минимизации рисков распространения корнезаражающих патогенов в закрытых гидропонных системах. В: Международный симпозиум по защищенному культивированию в умеренном зимнем климате: современные тенденции устойчивого развития, стр. 495—502
Veresoglou SD, Barto EK, Menexes G, Rillig MC (2013) Оплодотворение влияет на тяжесть заболевания, вызванного возбудителями грибковых растений. Растение Патол 62:961 —969. https://doi.org/10.1111/ppa.12014
Verma S, Daverey A, Sharma A (2017) Медленная фильтрация песка для очистки воды и сточных вод — обзор. Энвирон Технол Рев 6:47 —58. https://doi.org/10.1080/21622515.2016.1278278
Вильярроэль М, Юнге Р, Комивес Т, Кёниг Б, Плаза I, Биттсански А, Йоли А (2016) Обзор аквапоники в Европе. Вода (Швейцария) 8:3 -9. https://doi.org/10.3390/w8100468
Вехтер-Кристенсен Б, Сундин П, Гертссон УЭ, Хультберг М, Халил С, Дженсен П, БеркельманнЛохнерц Б, Воханка В (1997) Управление микробными факторами в ризосфере и питательным раствором гидропонически выращенных томатов. Акта Хортик. https://doi.org/10.17660/ Актаортика.1997.450.40
Waechter-Kristensen B, Caspersen S, Adalsteinsson S, Sundin P, Jensen P (1999) Органические соединения и микроорганизмы в замкнутой гидропонной культуре: возникновение и влияние на рост растений и минеральное питание. Акта Хортик 481:197 —204
Whipps JM (2001) Микробные взаимодействия и биоконтроль в ризосфере//Вестн. J Exp Бот 52:487 —511. https://doi.org/10.1093/jexbot/52.suppl_1.487
Wielgosz ZJ, Anderson TS, Timmons MB (2017) Микробные эффекты на производство аквапонически выращенного салата. Садоводство 3:46. https://doi.org/10.3390/horticulturae3030046
Уилли Дж.М., Шервуд ЛМ, Вулвертон СиДжей (2008) Прескотт, Харли и Кляйн микобиология, 7-е издание. Высшее образование Макгрейхилла, Нью-Йорк
Дезинфекция рециркулирующих растворов питательных веществ медленной песочной фильтрацией. Акта Хортик. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.1995.382.28
Zou Y, Hu Z, Zhang J, Xie H, Liang S, Wang J, Yan R (2016) Попытки повысить эффективность использования азота аквапоники путем добавления нитрифов и градации наполнителя. Environ Sci загрязняющих веществ Res 23:6671 —6679. https://doi.org/10.1007/s11356-015-5898-0
Open Access Данная глава лицензирована в соответствии с условиями международной лицензии Creative Commons Attribution 4.0, которая разрешает использование, совместное использование, адаптацию, распространение и воспроизведение на любом носителе или формате, при условии, что вы даете соответствующий кредит первоначальному автору (авторам) и источнику, предоставите ссылку на лицензии Creative Commons и указать, были ли внесены изменения.
Изображения или другие материалы третьих лиц в этой главе включены в лицензию Creative Commons главы, если иное не указано в кредитной линии материала. Если материал не включен в лицензию Creative Commons главы и ваше предполагаемое использование не разрешено законом или превышает разрешенное использование, вам необходимо получить разрешение непосредственно от правообладателя.