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Gilles Stouvenakers, Peter Dapprich, Sébastien Massart et M. Haïssam Jijakli

Abstract Parmi la diversité des maladies végétales survenant dans l'aquaponie, les agents pathogènes d'origine du sol, tels que Fusarium spp., Phytophthora spp. et Pythium spp., sont les plus problématiques en raison de leur préférence pour les conditions humides et aquatiques. Phytophthora spp. et Pythium spp. qui appartiennent aux pseudo-champignons Oomycetes nécessitent une attention particulière en raison de leur forme mobile de dispersion, les zoospores qui peuvent se déplacer librement et activement dans l'eau liquide. En aquaponie couplée, les méthodes curatives sont encore limitées en raison de la toxicité possible des pesticides et des agents chimiques pour les poissons et les bactéries bénéfiques (par exemple, les bactéries nitrifiantes du biofiltre). En outre, la mise au point d'agents de contrôle biologique à usage aquaponique n'en est qu'à ses débuts. Par conséquent, les moyens de contrôler l'infection initiale et la progression d'une maladie sont principalement basés sur des actions préventives et des traitements physiques de l'eau. Cependant, une action suppressive (suppression) pourrait se produire en milieu aquaponique compte tenu des articles récents et de l'activité suppressive déjà mise en évidence en hydroponie. De plus, l'eau aquaponique contient de la matière organique qui pourrait favoriser l'établissement et la croissance de bactéries hétérotrophes dans le système ou même améliorer directement la croissance et la viabilité des plantes. En ce qui concerne l'hydroponie organique (c'est-à-dire l'utilisation de la fertilisation organique et des milieux végétaux organiques), ces bactéries pourraient agir comme agents antagonistes ou comme élicitateurs de défense végétale pour protéger les plantes contre les maladies. À l'avenir, les recherches sur la capacité de suppression des maladies du biotope aquaponique devront être intensifiées, ainsi que l'isolement, la caractérisation et la formulation des antagonistes pathogènes des plantes microbiennes. Enfin, une bonne connaissance de l'identification rapide des agents pathogènes, combinée aux méthodes de lutte et à la surveillance des maladies, comme le recommande la lutte intégrée contre les ravageurs végétaux, est la clé d'un contrôle efficace des maladies des plantes en aquaponie.

Mots-clés Pathogènes · Champignons · Aquaponics · Biotope · Suppressif · Lutte antiparasitaire · Agents biocontrôle

Contenu

G. Stouvenakers · S. Massart · M. H. Jijakli

Laboratoire de pathologie végétale intégrée et urbaine, Université de Liège, Gembloux Agro-Bio Tech, Gembloux, Belgique

P. Dapprich

Département de l'agriculture, Fachhochschule Université des sciences appliquées de Südwestfalen, Soest, Allemagne

© L'auteur (s) 2019 353

S. Goddek et coll. (éd.), Aquaponics Food Production Systems, https://doi.org/10.1007/978-3-030-15943-6_14

Références

Adamczyk B, Smolander A, Kitunen V, Godlewski M (2010) Les protéines comme source d'azote pour les plantes : une nouvelle sur l'exsudation des protéases par les racines des plantes. Signal des plantes Behav 5:817 —819. https ://doi.org/10.4161/psb.5.7.11699

Albajes R, Lodovica Gullino M, Van Lenteren JC, Elad Y (2002) Gestion intégrée des ravageurs et des maladies dans les cultures en serre. Éditeurs académiques Kluwer. https://doi.org/10.1017/ CBO9781107415324.004

Alhussaen K (2006) Pythium et Phytophthora associés à la maladie racinaire de la laitue hydroponique. Université de technologie Faculté des sciences de Sydney. https://opus.lib.uts.edu.au/handle/10453/ 36864

Anderson TS, de Villiers D, Timmons MB (2017) Réaction de croissance et de composition élémentaire tissulaire des Épinards (Spinacia oleracea) aux conditions hydroponiques et aquaponiques de qualité de l'eau. Horticulturae 3:32. https://doi.org/10.3390/horticulturae3020032

Arras G, Arru S (1997) Mécanisme d'action de certains antagonistes microbiens contre les pathogènes fongiques. Ann Microbiol Enzimol 47:97 —120

Attramadal KJK, Salvesen I, Xue R, Øie G, Størseth TR, Vadstein O, Olsen Y (2012) La recirculation en tant que stratégie de contrôle microbien possible dans la production de larves marines. Aquac Eng 46:27 —39. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2011.10.003

Bartelme RP, Oyserman BO, Blom JE, Sepulveda-Villet OJ, Newton RJ (2018) Décapage du sol : la croissance des plantes favorise les opportunités microbiologiques en aquaponie. Front Microbiol 9:8. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.00008

Beneduzi A, Ambrosini A, Passaglia LMP (2012) Rhizobactéries favorisant la croissance des plantes (PGPR) : leur potentiel en tant qu'antagonistes et agents de contrôle biologique. Genet Mol Biol 35 (4) :1044—1051

Bittsanszky A, Gyulai G, Junge R, Schmautz Z, Komives T, Has CAR, Otto H (2015) Protection des plantes dans les systèmes agricoles écocycliques : l'aquaponie à titre d'exemple. In : Congrès international pour la protection des végétaux (CIPV), Berlin, Allemagne, pp. 2-3. https://doi.org/10.13140/RG.2.1. 4458.0321

Bohme M (1999) Effets de Lactate, Humate et Bacillus subtilis sur la croissance des plants de tomates dans les systèmes hydroponiques. In : Colloque international sur les médias de croissance et l'hydroponie. Acta Horticulturae, pp. 231—239

Marque T (2001) Importance et caractérisation de la composante biologique dans les filtres lents. Acta Hortic 554:313 —321

Calvo-bado LA, Pettitt TR, Parsons N, Petch GM, Morgan JAW, Whipps JM (2003) Analyse spatiale et temporelle de la communauté microbienne dans les filtres à sable lent utilisés pour le traitement de l'eau d'irrigation horticole. Appl Microbiol Enviromental 69:2116 —2125. https://doi.org/ 10.1128/AEM.69.4.2116

Campbell R (1989) Contrôle biologique des agents pathogènes microbiens végétaux. Presse de l'Université de Cambridge, Cambridge

Chang-Ho Y (1970) Effet de l'exsudat de racine de pois sur la germination des kystes zoospores Pythium aphanidermatum. Can J Bot 48:1501 —1514

Chatterton S, Sutton JC, Boland GJ (2004) Calendrier des applications de chlororaphis pour le contrôle de Pythium aphanidermatum, Pythium dissotocum et de la pourriture des racines chez les poivrons hydroponiques. Contrôle du biol 30:360 —373. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2003.11.001

Cherif M, Tirilly Y, Belanger RR (1997) Effet de la concentration d'oxygène sur la croissance des plantes, la peroxydation des lipides et la réceptivité des racines de tomate à Pythium dans des conditions hydroponiques. Eur J Plant Pathol 103:255 —264

Chinta YD, Kano K, Widiastuti A, Fukahori M, Kawasaki S, Eguchi Y, Misu H, Odani H, Zhou S, Narisawa K, Fujiwara K, Shinohara M, Sato T (2014) Effet de la liqueur raide de maïs sur la pourriture des racines de laitue (Fusarium oxysporum f.sp. cultures hydroponiques. J Sci Food Agric 94:2317 —2323. https://doi.org/10.1002/jsfa.6561

Chinta YD, Eguchi Y, Widiastuti A, Shinohara M, Sato T (2015) L'hydroponie organique induit une résistance systémique contre l'agent pathogène aéroporté, Botrytis cinerea (moisissure grise). J Plant Interact 10:243 —251. https://doi.org/10.1080/17429145.2015.1068959

Colhoun J (1973) Effets des facteurs environnementaux sur les maladies des plantes. Annu Rev Phytopathol

11:343 —364 da Silva Cerozi B, Fitzsimmons K (2016) Utilisation de Bacillus spp. pour améliorer la disponibilité du phosphore et servir de promoteur de la croissance des plantes dans les systèmes aquaponiques. Sci Hortic (Amsterdam) 211:277 —282. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2016.09.005

Delaide B, Goddek S, Gott J, Soyeurt H, Jijakli HM (2016) Laitue (Lactuca sativa L. var. Sucrine) performance de croissance dans une solution aquaponique complétée surpasse l'hydroponie. Eau 8:1 —11. https://doi.org/10.3390/w8100467

Déniel F, Rey P, Chérif M, Guillou A, Tirilly Y (2004) Les bactéries indigènes ayant des activités antagonistes et favorisant la croissance végétale améliorent l'efficacité de filtration lente en culture sans sol. Can J Microbiol 50:499 —508. https://doi.org/10.1139/w04-034

Dordas C (2008) Rôle des nutriments dans la lutte contre les maladies des plantes dans l'agriculture durable : une revue.

Agron Sustained Dev 28:33 —46. https://doi.org/10.1051/agro:2007051 du Jardin P (2015) Biostimulants végétaux : définition, concept, principales catégories et régulation. Sci Hortic (Amsterdam) 196:3 —14. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.021

Ehret DL, Bogdanoff C, Utkhede R, Lévesque A, Menzies JG, Ng K, Portree J (1999) Lutte contre les maladies avec filtration lente pour les cultures en serre cultivées en recirculation. Pacific Agroalimentaire Cent Res Cent Tech Rep 155:37

Ehret DL, Alsanius B, Wohanka W, Menzies JG, Utkhede R (2001) Désinfestation de solutions nutritives recirculantes en horticulture en serre. Agronomie 21:323 —339. https://doi.org/10.1051/ agro:2001127

Directive 2009/128/CE du Parlement européen et du Conseil du 21 octobre 2009 établissant un cadre pour une action communautaire visant à parvenir à une utilisation durable des pesticides. 309 octobre, pp. 71 à 86. https://doi.org/10.3000/17252555.L_2009.309

Evenhuis B, Nijhuis E, Lamers J, Verhoeven J, Postma J (2014) Méthodes alternatives de contrôle de Phytophthora cactorum dans des fraises cultivées dans des milieux de culture sans sol, Acta Hortic 1044:337 —342. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2014.1044.44

FAO (2008) Bonnes pratiques agricoles [Document WWW]. http://www.fao.org/prods/gap/. Consulté le 27 févr. 2018

Folman LB, De Klein MJEM, Postma J, Van Veen JA (2004) Production de composés antifongiques par Lysobacter enzymogenes isolat 3.1T8 dans des conditions différentes par rapport à son efficacité en tant qu'agent de contrôle biologique de Pythium aphanidermatum dans le concombre. Biol. Contrôle 31:145 —154. https ://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2004.03.008

Fujiwara K, Aoyama C, Takano M, Shinohara M (2012) Suppression de la maladie bactérienne de Ralstonia solanacearum par un système hydroponique organique. Pathol végétal J Gen. https://doi.org/10. 1007/s10327-012-0371-0

Fujiwara K, Iida Y, Iwai T, Aoyama C, Inukai R, Ando A, Ogawa J, Ohnishi J, Terami F, Takano M, Shinohara M (2013) La communauté microbienne de la rhizosphère dans un système de minéralisation multiple parallèle supprime le champignon pathogène Fusarium oxysporum. Microbiologieouverte 2:997 —1009. https://doi.org/10.1002/mbo3.140

Funck-Jensen D, Hockenhull J (1983) L'amortissement, causé par Pythium, est-il moins problématique en hydroponie que dans les systèmes de culture traditionnels ? Acta Hortic 133:137 —145

Furtner B, Bergstrand K, Brand T (2007) Facteurs abiotiques et biotiques dans des filtres lents intégrés à des systèmes hydroponiques fermés. Eur J Hortic Sci 72:104 —112

Ganeshan G, Kumar AM (2005) Pseudomonas fluorescens, un antagoniste bactérien potentiel pour lutter contre les maladies des plantes. J Plant Interact 1:123 —134. https://doi.org/10.1080/17429140600907043 Geary B, Clark J, Hopkins BG, Jolley VD (2015) Des niveaux insuffisants, adéquats et excessifs d'azote établis en hydroponique pour des études biotiques et abiotiques sur la pomme de terre. J Plant Nutr 38:41 —50. https://doi.org/10.1080/01904167.2014.912323

Goddek S, Vermeulen T (2018) Comparaison de la performance de croissance de Lactuca sativa dans les solutions d'eau de pluie et d'éléments nutritifs hydroponiques à base d'eau de pluie. Aquac Int 10. https://doi.org/10.1007/s10499018-0293-8

Goddek S, Delaide B, Mankasingh U, Vala Ragnarsdottir K, Jijakli H, Thorarinsdottir R (2015) Défis de l'aquaponie durable et commerciale. Durabilité 7:4199 —4224. https://doi. org/10.3390/su7044199

Goddek S, Espinal CA, Delaide B, Jijakli MH, Schmautz Z, Wuertz S, Keesman KJ (2016) Navigation vers des systèmes aquaponiques découplés : une approche de conception dynamique des systèmes. Eau (Suisse) 8:1 —29. https://doi.org/10.3390/W8070303

Gonçalves AA, Gagnon GA (2011) Application de l'ozone dans le système d'aquaculture en recirculation : un aperçu. Ozone Sci Eng 33:345 —367. https://doi.org/10.1080/01919512.2011.604595

Gravel V, Dorais M, Dey D, Vandenberg G (2015) Les effluents de poisson favorisent la croissance des racines et suppriment les maladies fongiques dans les greffes de tomate. Can J Plant Sci 95:427 —436

Grunert O, Hernandez-Sanabria E, Vilchez-Vargas R, Jauregui R, Pieper DH, Perneel M, Van Labeke M-C, Reheul D, Boon N (2016) Les milieux de culture minéraux et organiques ont une structure communautaire, une stabilité et une fonctionnalité distinctes dans les systèmes de culture sans sol. Sci. Rép. 6:18837. https://doi.org/10.1038/srep18837

Haarhoff J, Clasby JL (1991) Mécanismes biologiques et physiques dans la filtration lente sur sable. Dans : Logsdon GS (ed) Filtration lente sur sable, vol. 1. American Society of Civil Engineers, New York, p. 19—68

Haas D, Défago G (2005) Contrôle biologique des agents pathogènes présents dans le sol par des pseudomonades fluorescentes. Nat Rev Microbiol 3:307 —319. https://doi.org/10.1038/nrmicro1129

Hirayama K, Mizuma H, Mizue Y (1988) L'accumulation de substances organiques dissoutes dans les systèmes de culture en recirculation fermée. Aquac Eng 7:73 —87. https://doi.org/10.1016/0144-8609 (88) 90006-4

Hong CX, Moorman GW (2005) Les agents pathogènes des plantes dans l'eau d'irrigation : défis et opportunités. CRC Crit Rev plante Sci 24:189 —208. https://doi.org/10.1080/07352680591005838

Hultberg M, Holmkvist A, Alsanius B (2011) Stratégies d'administration de pseudomonades produisant des biotensioactifs pour le contrôle biologique dans des systèmes hydroponiques fermés. Crop Prot 30:995 —999. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2011.04.012

James, Becker JO (2007) Identification des micro-organismes impliqués dans la suppression d'agents pathogènes spécifiques dans le sol. Annu Rev Phytopathol 45:153 —172. https://doi.org/10.1146/annurev.phyto.45.062806.094354

Jarvis WR (1992) Gestion des maladies dans les cultures en serre. L'American Phytopathological Society, St. Paul

Jones SW, Donaldson SP, Deacon JW (1991) Comportement des zoospores et des kystes de zoospores par rapport à l'infection racinaire par Pythium aphanidermatum. Nouveau Phytol 117:289 —301. https://doi.org/10. 1111/j.1469-8137.1991.tb04910.x

Khalil S, Alsanius BW (2001) Dynamique de la microflore indigène qui habite la zone racinaire et la solution nutritive de la tomate dans un système de serre fermé commercial. Gartenbauwissenschaft 66:188 —198

Khalil S, Alsanius WB (2011) Effet de la teneur moyenne en eau sur le contrôle biologique des pathogènes racinaires dans un système fermé sans sol. J Hortic Sci Biotechnol 86:298-304. https://doi.org/ 10.1080/14620316.2011.11512764

Khalil S, Hultberg M, Alsanius BW (2009) Effets du milieu de croissance sur les interactions entre les agents de lutte biologique et les agents pathogènes des racines de tomate dans un système hydroponique fermé. J Hortic Sci Biotechnol 84:489 —494. https://doi.org/10.1080/14620316.2009.11512553

Khan A, Sutton JC, Grodzinski B (2003) Effets de Pseudomonas chlororaphis sur Pythium aphanidermatum et la pourriture des racines chez les poivrons cultivés dans des creux hydroponiques à petite échelle. Biocontrol Sci Technol 13:615 —630. https://doi.org/10.1080/0958315031000151783

Koohakan P, Ikeda H, Jeanaksorn T, Tojo M, Kusakari S-I, Okada K, Sato S (2004) Évaluation des micro-organismes indigènes en culture sans sol : occurrence et caractéristiques quantitatives dans les différents systèmes de culture. Sci Hortic (Amsterdam) 101:179 —188. https://doi.org/10.1016/j. scienta.2003.09.012

Lee S, Lee J (2015) Bactéries et champignons bénéfiques dans les systèmes hydroponiques : types et caractéristiques des méthodes de production alimentaire hydroponique. Sci Hortic (Amsterdam) 195:206 —215. https://doi.org/10. 1016/j.scienta.2015.09.011

Leonard N, Blancheton JP, Guiraud JP (2000) Populations de bactéries hétérotrophes dans un système expérimental d'aquaculture en recirculation. Aquac Fr 22:109 —120

Leonard N, Guiraud JP, Gasset E, Cailleres JP, Blancheton JP (2002) Bactéries et nutriments — azote et carbone — dans un système de recirculation pour la production de bar de mer. Aquac Fr 26:111 —127

Lepoivre P (2003) Phytopathologie, 1ère édition. éd. Les Presses Agronomiques de Gembloux Bruxelles : De Boeck

Liu W, Sutton JC, Grodzinski B, Kloepper JW, Reddy MS (2007) Contrôle biologique de la pourriture racinaire Pythium du chrysanthème dans des unités hydroponiques à petite échelle. Phytoparasitica 35:159 —178. https ://doi.org/10.1007/BF02981111

Love DC, Fry JP, Li X, Hill ES, Genello L, Semmens K, Thompson RE (2015) Production et rentabilité de l'aquaponie commerciale : résultats d'une enquête internationale. Aquaculture 435:67 —74. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.09.023

Maher M, Prasad M, Raviv M (2008) Ch 11 — composants organiques sans sol. Dans : Culture sans sol : théorie et pratique. Elsevier B.V., Amsterdam, pp. 459-504. https://doi.org/10.1016/ B978-044452975-6.50013-7

Mangmang JS, Deaker R, Rogers G (2014) Réponse des semis de laitue fertilisés avec des effluents de poisson à l'inoculation d'Azospirillum brasilense. Biol Agric Hortique 31:61 —71. https://doi.org/ 10.1080/01448765.2014.972982

Mangmang JS, Deaker R, Rogers G (2015a) Effet d'inoculation d'Azospirillum brasilense sur le basilic cultivé sous système de production aquaponique. Org Agric 6:65 —74. https://doi.org/10.1007/ s13165-015-0115-5

Mangmang JS, Deaker R, Rogers G (2015b) Maximiser l'utilisation des effluents de poisson pour la production de semis de légumes par Azospirillum Brasilense. Procedia Environ Sci 29:179. https://doi.org/ 10.1016/j.proenv.2015.07.248

Mangmang JS, Deaker R, Rogers G (2015c) Réponse des semis de concombre fertilisés avec des effluents de poisson à l'Azospirillum brasilense. Int J Veg Sci 5260:150409121518007. https://doi.org/10. 1080/19315260.2014.967433

Martin FN, Loper JE (1999) Maladies du sol causées par Pythium spp. : écologie, épidémiologie et perspectives de lutte biologique contre les maladies des plantes transmises par le sol causées par Pythium spp. : écologie, épidémiologie et perspectives de lutte biologique. CRC Crit Rev Usine Sci 18:11 —181

McMurty MR, Nelson PV, Sanders DC, Hodges L (1990) Culture au sable de légumes à l'aide d'effluents aquacoles recirculés. Appl Agric Res 5:280 —284

McPherson GM, Harriman MR, Pattison D (1995) Le potentiel de propagation des maladies racinaires dans les systèmes hydroponiques en recirculation et leur contrôle par désinfection. Med Fac Landbouww Univ Gent 60:371 —379

Michaud L, Blancheton JP, Bruni V, Piedrahita R (2006) Effet du carbone organique particulaire sur les populations bactériennes hétérotrophes et efficacité de nitrification dans les filtres biologiques. Aquac Eng 34:224 —233. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2005.07.005

Michaud L, Giudice AL, Interdonato F, Triplet S, Ying L, Blancheton JP (2014) C/N déplacement structurel induit par le rapport C/N des communautés bactériennes à l'intérieur de biofiltres aquacoles en laboratoire. Aquac Eng 58:77 —87. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2013.11.002

Mitchell CE, Reich PB, Tilman D, Groth JV (2003) Effets des concentrations élevées de COSub2/sub, des dépôts d'azote et de la diminution de la diversité des espèces sur la maladie fongique des plantes foliaires. Glob Chang Biol 9, 438—451 https://doi.org/10.1046/j.1365-2486.2003.00602.x

Monsees H, Kloas W, Wuertz S (2017) Systèmes découplés à l'essai : Éliminer les goulots d'étranglement pour améliorer les processus aquaponiques. PLoS One 12:1 —18. https://doi.org/10.1371/journal.pone. 0183056

Montagne V, Charpentier S, Cannavo P, Capiaux H, Grosbellet C, Lebeau T (2015) Structure et activité des communautés fongiques spontanées dans les substrats organiques utilisés pour les cultures sans sol. Sci Hortic (Amsterdam) 192:148 —157. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.06.011

Montagne V, Capiaux H, Barret M, Cannovo P, Charpentier S, Grosbellet C, Lebeau T (2017) Les communautés bactériennes et fongiques varient selon le type de substrat organique : implications pour la lutte biologique des cultures sans sol. Environ Chem Lett 15:537 —545. https://doi.org/10.1007/s10311017-0628-0

Moruzzi S, Firrao G, Polano C, Borselli S, Loschi A, Ermacora P, Loi N, Martini M (2017) Caractérisation assistée par génomique de la souche Pf4 de Pseudomonas sp., un agent potentiel de contrôle biologique en hydroponique. Biocontrol Sci Technol 27:969 —991. https://doi.org/10.1080/09583157.2017. 1368454

Mukerji KG (2006) Activité microbienne dans la rhizosphère. Springer/GmbH & Co, Dordrecht/Berlin et Heidelberg. https://doi.org/10.1017/CBO9781107415324.004

Munguia-Fragozo P, Alatorre-Jacome O, Rico-Garcia E, Torres-Pacheco I, Cruz-Hernandez A, Ocamppo-Velazquez RV, Garcia-Trejo JF, Guevara-Gonzalez RG (2015) Perspective pour les systèmes aquaponiques : (Omic) Technologies pour l'analyse des communautés microbiennes. Biomed Res Int 2015:10. https://doi.org/10.1155/2015/480386

Narayanasamy P (2013) Gestion biologique des maladies des cultures : volume 1 : caractéristiques des agents de contrôle biologique, Gestion biologique des maladies des cultures. Springer, Dordrecht. https://doi.org/10.1007/978-94-007-6380-7_1

Naylor SJ, Moccia RD, Durant GM (1999) Composition chimique des déchets de poisson solides décanables (fumier) provenant d'exploitations commerciales de truites arc-en-ciel en Ontario. Canada N Am J Aquac 61:21 -26. https://doi.org/10.1577/1548-8454(1999)061\0021:TCCOSS\2.0.CO;2

Nemethy S, Bittsanszky A, Schmautz Z, Junge R, Komives T (2016) Protéger les plantes contre les ravageurs et les maladies dans les systèmes aquaponiques. In : Empreinte écologique en Europe centrale. La Faculté Universitaire de Tourisme et d'Ecologie Presse, Sucha Beskidzka, pp1-8

Nielsen CJ, Ferrin DM, Stanghellini ME (2006) Efficacité des biosurfactants dans la gestion de Phytophthora capsici sur le poivre dans les systèmes hydroponiques en recirculation. Can J Plant Pathol 28:450 —460. https://doi.org/10.1080/07060660609507319

Nogueira R, Melo LF, Purkhold U, Wuertz S, Wagner M (2002) Dynamique des populations nitrifiantes et hétérotrophes dans les réacteurs de biofilm : effets du temps de rétention hydraulique et de la présence de carbone organique. Eau Res 36:469 —481

Pagliaccia D, Ferrin D, Stanghellini ME (2007) Suppression chimio-biologique des pathogènes zoosporiques qui infectent les racines dans les systèmes hydroponiques en recirculation. Sol végétal 299:163 —179. https://doi. org/10.1007/s11104-007-9373-7

Pagliaccia D, Merhaut D, Colao MC, Ruzzi M, Saccardo F, Stanghellini ME (2008) Amélioration sélective de la population de pseudomonades fluorescentes après modification de la solution nutritive recirculante de plantes cultivées en hydroponie avec un stabilisateur d'azote. Microb Ecol 56:538 —554. https://doi.org/10.1007/s00248-008-9373-z

Pantanella E, Cardarelli M, Colla G, Rea E, Marcucci A (2010) Aquaponie vs. hydroponique : production et qualité de la laitue, pp. 887-893. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2012. 927.109

Pantanella E, Cardarelli M, Di Mattia E, Colla G (2015) Aquaponie et sécurité alimentaire : effets de la stérilisation UV sur la production de coliformes totaux et de laitues. In : Conférence et exposition sur la culture sans sol, pp71-76

Parvatha Reddy P (2016) Protection durable des cultures sous culture protégée. Springer. https ://doi.org/doi, Springer. https://doi.org/10.1007/978-981-287-952-3_7

Paulitz TC, Bélanger RR (2001) Lutte biologique dans les systèmes de serre. Annu Rev Phytopathol 39:103 —133

Pérez-García A, Romero D, de Vicente A (2011) Protection des plantes et stimulation de la croissance par les micro-organismes : applications biotechnologiques du bacilli en agriculture. Curr Opin Biotechnol 22 (2) :187—193. https://doi.org/10.1016/j.copbio.2010.12.003

Postma J, van Os E, Bonants PJM (2008) Ch 10 — Stratégies de détection et de gestion des agents pathogènes dans le système de culture des plantes sans sol. Dans : Culture sans sol : théorie et pratique. Elsevier B.V., Amsterdam, p. 425 à 457. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-52975-6.50012-5

Postma J, Stevens LH, Wiegers GL, Davelaar E, Nijhuis EH (2009) Contrôle biologique de Pythium aphanidermatum dans le concombre avec application combinée de la souche Lysobacter enzymogenes

3.1T8 et chitosane. Biol Control 48:301 —309. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2008.11.006 Rakocy J (2007) Dix lignes directrices pour les systèmes aquaponiques. Aquaponie J 46:14 —17

Rakocy JE (2012) Aquaponics — intégrant la culture des poissons et des plantes. Dans : Tidwell JH (ed) Systèmes de production aquacole. Wiley (New York), pp. 343-386

Rakocy JE, Maseer PM, Losordo TM (2006) Systèmes de production de bassins aquacoles recirculants : Aquaponie — culture intégrée des poissons et des plantes. South Reg Aquac Cent Publication No. 454, 16 p. http://srac.tamu.edu/getfile.cfm?pubid=105

Renault D, Déniel F, Benizri E, Sohier D, Barbier G, Rey P (2007) Caractérisation des souches Bacillus et Pseudomonas à caractères suppressifs isolées de l'unité de filtration hydroponique à la tomate. Can J Microbiol 53:784 —797. https://doi.org/10.1139/W07-046

Renault D, Vallance J, Déniel F, Wery N, Godon JJ, Barbier G, Rey P (2012) Diversité des communautés bactériennes qui colonisent les unités filtrantes utilisées pour lutter contre les pathogènes végétaux dans les cultures sans sol. Microb Ecol 63:170 —187. https://doi.org/10.1007/s00248-011-9961-1

Resh HM (2013) Production d'aliments hydroponiques : un guide définitif pour le jardinier avancé et le cultivateur hydroponique commercial, 7th edn. CRC Press, Boca Raton

Rosberg AK (2014) Dynamique des micro-organismes racinaires dans les systèmes de culture hydroponique fermés. Département des biosystèmes et de la technologie, Université suédoise des sciences agricoles, Alnarp

Rurangwa E, Verdegem MCJ (2015) Les micro-organismes dans les systèmes d'aquaculture en recirculation et leur gestion. Rév Aquac 7:117 —130. https://doi.org/10.1111/raq.12057

Saha S, Monroe A, Day MR (2016) Croissance, rendement, qualité des plantes et nutrition du basilic (Ocimum basilicum L.) dans les systèmes agricoles sans sol. Ann Agric Sci 61:181 —186. https://doi.org/10. 1016/j.aoas.2016.10.001

Schmautz Z, Graber A, Jaenicke S, Goesmann A, Junge R, Smits THM (2017) Diversité microbienne dans différents compartiments d'un système aquaponique. Microbiol arche 1—8. https://doi.org/10. 1007/s00203-016-1334-1

Schreier HJ, Mirzoyan N, Saito K (2010) Diversité microbienne des filtres biologiques dans les systèmes d'aquaculture en recirculation. Curr Opin Biotechnol 21:318 —325. https://doi.org/10.1016/j.copbio.2010. 03.011

Sharrer MJ, Summerfelt ST, Bullock GL, Gleason LE, Taeuber J (2005) Inactivation de bactéries par irradiation ultraviolette dans un système de culture de salmonidés en recirculation. Aquac Eng 33:135 —149. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2004.12.001

Shinohara M, Aoyama C, Fujiwara K, Watanabe A, Ohmori H, Uehara Y, Takano M (2011) Minéralisation microbienne de l'azote organique en nitrate pour permettre l'utilisation d'engrais organiques en hydroponie. Sol Sci Plante Nutr 57:190 —203. https://doi.org/10.1080/00380768.2011.554223

Sirakov I, Lutz M, Graber A, Mathis A, Staykov Y (2016) Possibilité d'une activité de biocontrôle combinée contre les poissons fongiques et les agents pathogènes végétaux par des isolats bactériens provenant d'un système aquaponique modèle. Eau 8:1 —7. https://doi.org/10.3390/w8110518

Snoeijers SS, Alejandro P (2000) L'effet de l'azote sur le développement des maladies et l'expression des gènes chez les pathogènes bactériens et fongiques des plantes. Eur J Plant Pathol 106:493 —506

Somerville C, Cohen M, Pantanella E, Stankus A, Lovatelli A (2014) Production d'aliments aquaponiques à petite échelle — élevage intégré des poissons et des plantes. FAO, Rome

Sopher CR, Sutton JC (2011) Relations quantitatives entre Pseudomonas chlororaphis 63-28 et Pythium pourriture racinaire et croissance chez les poivrons hydroponiques. Trop Plant Pathol 36:214 —224. https://doi.org/10.1590/S1982-56762011000400002

Spadaro D, Gullino ML (2005) Amélioration de l'efficacité des agents de lutte biologique contre les agents pathogènes d'origine tellurique. Crop Prot 24:601 —613. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2004.11.003

Stanghellini ME, Miller RM (1997) Leur identité et leur efficacité dans la lutte biologique contre les pathogènes zoosporiques. Plante Dis 81:4 —12

Stanghellini ME, Rasmussen SL (1994) Hydroponics : une solution pour les pathogènes zoosporiques. Plant Dis 78:1129 —1138

Stouvenakers G, Sébastien M, Haissam JM (2017) Propriétés de biocontrôle de l'eau d'aquaculture en recirculation contre les pathogènes racinaires hydroponiques. Présentation orale à la réunion Aquaculture Europe 2017, Dubrovnik, Croatie

Sugita H, Nakamura H, Shimada T (2005) Communautés microbiennes associées aux matériaux filtrants dans les systèmes d'aquaculture en recirculation des poissons d'eau douce. Aquaculture 243:403-409. https://doi.org/ 10.1016/j.aquaculture.2004.09.028

Sutton JC, Sopher CR, Owen-Going TN, Liu W, Grodzinski B, Hall JC, Benchimol RL (2006) Étiologie et épidémiologie de la pourriture racinaire Pythium dans les cultures hydroponiques : connaissances et perspectives actuelles. Summa Phytopathol 32:307 —321. https://doi.org/10.1590/S010054052006000400001

Takeda S, Kiyono M (1990) Caractérisation des substances jaunes accumulées dans un système fermé de recirculation pour la pisciculture. Dans : Actes du deuxième forum des pêches asiatiques, pp. 129—132

Tal Y, Watts JEM, Schreier SB, Sowers KR, Schreier HJ, Schreier HJ (2003) Caractérisation de la communauté microbienne et des processus de transformation de l'azote associés aux bioréacteurs en lit mobile dans un système de mariculture recirculé fermé. Aquaculture 215:187 —202

Thongkamngam T, Jaenaksorn T (2017) Fusarium oxysporum (F221-B) comme agent de lutte biologique contre les champignons pathogènes végétaux in vitro et en hydroponie. Plante Prot Sci 53:85 —95. https://doi.org/10. 17221/59/2016-PPS

Timmons MB, Ebeling JM (2010) Reculating aquaculture, 2e éd. Publication du CNER, Ithaque

Tu JC, Papadopoulos AP, Hao X, Zheng J (1999) La relation entre une pourriture racinaire Pythium et des micro-organismes rhizosphériques dans un système fermé circulant et ouvert dans la culture de laine de roche de tomate. Acta Hort (ISHS) 481:577 —583

Vallance J, Déniel F, Le Floch G, Guérin-Dubrana L, Blancard D, Rey P (2010) Microorganismes pathogènes et bénéfiques dans les cultures sans sol. Agron Sustained Dev 31:191 —203. https://doi.org/ 10.1051/agro/2010018

Van Der Gaag DJ, Wever G (2005) Conduccivité de différents milieux de culture sans sol à la pourriture des racines Pythium et de la cime du concombre dans des conditions quasi commerciales. Eur J Plant Pathol 112:31 —41. https://doi.org/10.1007/s10658-005-1049-7

Van Os EA (2009) Comparaison de certains traitements chimiques et non chimiques pour désinfecter une solution nutritive recirculante. Acta Hortique 843:229 —234

Van Os EA, Amsing JJ, Van Kuik AJ, Willers H (1999) Filtration lente du sable : une méthode potentielle pour l'élimination des agents pathogènes et des nématodes dans les solutions nutritives recirculant à partir de cultures cultivées en verre. Acta Hortic 481:519 —526

van Os EA, Bruins M, Wohanka W, Seidel R (2001) Filtration lente : une technique visant à réduire au minimum les risques de propagation d'agents pathogènes infectieux racinaires dans les systèmes hydroponiques fermés. Dans : Colloque international sur la culture protégée dans les climats hivernaux doux : tendances actuelles pour les techniques durables, pp. 495-502

Veresoglou SD, Barto EK, Menexes G, Rillig MC (2013) La fécondation affecte la gravité de la maladie causée par des agents pathogènes fongiques des plantes. Plant Pathol 62:961 —969. https://doi.org/10.1111/ppa.12014

Verma S, Daverey A, Sharma A (2017) Filtration lente au sable pour le traitement de l'eau et des eaux usées — une revue. Environ Technol Rev 6:47 —58. https://doi.org/10.1080/21622515.2016.1278278

Villarroel M, Junge R, Komives T, König B, Plaza I, Bittsánszky A, Joly A (2016) Enquête sur l'aquaponie en Europe. Eau (Suisse) 8:3 —9. https://doi.org/10.3390/w8100468

Waechter-Kristensen B, Sundin P, Gertsson UE, Hultberg M, Khalil S, Jensen P, Berkelmannloehnertz B, Wohanka W (1997) Gestion des facteurs microbiens dans la rhizosphère et solution nutritive de tomates cultivées en hydroponie. Acta Hortic. https://doi.org/10.17660/ ActaHortic.1997.450.40

Waechter-Kristensen B, Caspersen S, Adalsteinsson S, Sundin P, Jensén P (1999) Composés organiques et micro-organismes en culture hydroponique fermée : présence et effets sur la croissance des plantes et la nutrition minérale. Acta Hortic 481:197 —204

Whipps JM (2001) Interactions microbiennes et biocontrôle dans la rhizosphère. J Exp Bot 52:487 —511. https://doi.org/10.1093/jexbot/52.suppl_1.487

Wielgosz ZJ, Anderson TS, Timmons MB (2017) Effets microbiens sur la production de laitue cultivée en aquaponie. Horticulturae 3:46. https://doi.org/10.3390/horticulturae3030046

Willey JM, Sherwood LM, Woolverton CJ (2008) Prescott, Harley et Klein, 7e édn. Enseignement supérieur McGrawhill, New York

Wohanka W (1995) Désinfection des solutions nutritives recirculantes par filtration lente sur sable. Acta Hortic. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.1995.382.28

Zou Y, Hu Z, Zhang J, Xie H, Liang S, Wang J, Yan R (2016) Tentatives visant à améliorer l'efficacité de l'utilisation de l'azote des aquaponiques grâce à l'ajout de nitrifie et à la gradation des charges. Environ Sci Pollut Res 23:6671 —6679. https://doi.org/10.1007/s11356-015-5898-0

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